Каждый 5-й образец молока нестандартный,

Организатор смотра — общественное движение в защиту прав потребителей «Качество нашей жизни».

Участниками смотра были представители следующих организаций: Управление ветеринарии Воронежской области, Россельхознадзора по Воронежской и Липецкой областям, Департамент здравоохранения ВО, «Воронежский центр сертификации и мониторинга», управление развития предпринимательства, потребительского рынка и инновационной политики г. Воронежа, ФБУ «Воронежский ЦСМ», Центр сертификации и мониторинга, «Объединение потребителей России», Воронежский филиал РЭУ им. Плеханова, ВГАУ им. Петра 1, ВГУИТ, ПАО «МОЛВЕСТ», ООО «Лебедяньмолоко»,  Общественное движение «Качество нашей жизни», Общественная палата ВО, комитет Федерального проекта «Народный контроль» в ВО, СМИ.

Помощь в проведении смотра качества оказывали преподаватели и студенты ВГУИТ.

Органолептическая оценка качества молока питьевого пастеризованного производилась закрытым способом по 20-ти бальной шкале: внешний вид — 5; вкус и запах — 5; консистенция — 5, цвет — 5.

Для сравнительной оценки было представлено 14 образцов молока питьевого, изготовленного по ГОСТ 31450-2013, закупленных в розничной торговой сети г. Воронежа. Все образцы были пронумерованы и в этом порядке они представлялись на сравнительную органолептическую оценку по вкусу и запаху, консистенции и цвету.

Все присутствующие на смотре могли высказать свое мнение по каждому образцу и проставить оценку в балах в экспертные листы.

По результатам сравнительной органолептической оценки, наибольшие баллы получили образцы молока:

массовая доля жира 2,5%

— молоко питьевое пастеризованное ТМ «Простоквашино» 930 мл, изготовитель АО «Данон Россия», г. Липецк, ул. Катукова, 1.

массовая доля жира 3,2%

— молоко питьевое пастеризованное ТМ «Вкуснотеево» 900 г, изготовитель ПАО  Молочный комбинат «Воронежский», г. Воронеж, ул. 45 Стрелковой дивизии, 259;

— молоко питьевое пастеризованное ТМ «Лебедянь молоко» 900 г, изготовитель ООО «Лебедяньмолоко», Липецкая обл. , г. Лебедянь, ул. Южная, д.6;

— молоко питьевое пастеризованное ТМ «Эконива» 1000 мл, изготовитель ООО «ЭкоНива Молоко», юр. адрес: Воронежская обл., Бобровский, г. Бобров, ул. 60 лет Октября, д. 20, каб 2. Адрес производства: Воронежская обл., Лискинский р-н, с. Щучье, ул. Советская, 33.

По вкусовым показателям члены комиссии признали 3 образца (21 % от общего числа представленных образцов) несоответствующим требованиям нормативной документации, в том числе (см. прилагаемую таблицу).

По результатам лабораторных исследований в аккредитованной лаборатории Союза ТПП ВО, выявлен 1 образец молока фальсифицированный, это молоко питьевое пастеризованное, массовая доля жира 3,2%, ТМ «Торговый дом  «Сметанин» 900 мл, изготовитель ОАО «Брянский молочный комбинат», г. Брянск, ул. 50-й Армии, 2-Б.

Протокол оценки образцов молока питьевого представленного на сравнительном потребительском смотре качества 12 марта 2020 г.

Председатель экспертной комиссии, руководитель общественного

движения «Качество нашей жизни», к.т.н.                                                                     

Н.М. Дегтярев

Ведущий смотра, к.т.н.,  доцент кафедры

«Технология продуктов животного происхождения»

Ключникова Д.В.

Секретарь экспертной комиссии,

гл. специалист  движения «Качество нашей жизни»

Батищев А. А.

Россошанские промышленности и импортозамещение / Блог им. [email protected] / «P.S.

• 
  28 августа 2017, 00:56
  
  , Текст — Анастасия Розова
  | 1966
  | 0

Россошанский район славится огромной молочной продукцией, поэтому местные жители рекомендуют побаловать себя натуральными продовольствиями. В надежде узнать о технологии производства и импорта замещения, вошла в главный корпус ОАО Фирмы «Молоко».

Представившись вахтеру и рассказав, что сюда привело, она начала расспрашивать работников и зам. директора, с кем бы соединить меня, чтобы узнать детальнее о предприятии. Но ничего не вышло, так как директора Василия Ивановича ОСТРОУШКО, не было на месте, а брать эту ответственность никто не желал. Вахтер с возмущением ответила кому-то по телефону,- Никто ничего не знает! Я бы с радостью помогла девушке, но это в мои обязанности не входит, а тем более за такую мизерную заработную плату.

По словам вахтера, многие студенты приходят на практику. Могут проводиться экскурсии, только когда директор на месте. Завод на экологию влияет положительно. Коровки пасутся, кушают травку, удобрение попадает в землю и снова растет травка. Сырьё для производства молочной продукции поступает с фермерских хозяйств придонских лугов. Отходов после переработки молока нет, разве что сыворотка, и то её продают. Для производства сока Яблочного натурального, прямого отжима, используются яблоки, выращенные в собственных Россошанских садах.

На сегодняшний день завод выпускает более 100 наименований продукции под торговой маркой «Квилли Милли» представлена во всех магазинах города Россошь, по всей Воронежской области, также в соседних областях: Тамбовской, Ростовской, Липецкой и др.

Придя на следующее предприятие ООО «Пищекомбинат Россошанский», повторилась история.

Вахтер ничем не мог помочь, директор в разъездах. Но рассказал, что здесь производят пюре для повидла. Продолжил рассказывать, -На сегодняшний день яблок нет, но набирают жом с фирмы «Молоко», так как они выпускают яблочный сок и остаются отходы. А уже здесь идет выпаривание пектинов и прочее. На пюре идет составная часть производства повидла различных вкусовых качеств. Добавляют разные ароматические добавки, поэтому какое закажите повидло, такое и будет. Основа производства яблочное пюре.Жом вывозится на официальную городскую свалку-специальный полигон для отходов, там его утилизируют.

Технологами предприятия разработаны уникальные рецептуры по выпуску высококачественных продуктов из натурального сырья местных поставщиков, поэтому срок годности действительно можно сказать оправдывает продукцию.

• Теги:
• Квилли Милли
• , молоко
• , Россошь
• , яблочный сок
• , импортозамещение
• , Пищекомбинат
• , завод
• , директор
• , вахтер
• , отходы
• , история

Самое вкусное и питательное безмолочное молоко — NuMilk Shop

ПРЕДСТАВЛЯЕМ

ONE PRESS WONDER

Самый простой и удобный молочный завод на планете. Мы упоминали, что у него потрясающий вкус? Мы думаем, что вы больше никогда не купите расфасованное молоко.

Лист ожиданияДля дома

Начать SERVINGFood service

удобно делать на растительной основе

МОЛОКО, ЛАТТЕ И БЕЛКОВЫЕ ШЕЙКИ

Пакетики Numilk содержат только то, что вам действительно нужно в выбранном растительном молоке: настоящие, чистые, цельные пищевые ингредиенты.

Также важно указать, чего нет внутри: никаких жевательных резинок, наполнителей, обработанных подсластителей и консервантов. Только ингредиенты, которые вы можете распознать — они полезны для ваших вкусовых рецепторов, вашего здоровья и нашей планеты.

МЫ ВЕРИМ В ОБЕСПЕЧЕНИЕ УСТОЙЧИВОСТИ НАШЕЙ ПЛАНЕТЫ

ГДЕ МОЛОКО

НАСТОЯЩЕЕ, ПИТАТЕЛЬНОЕ И ЧИСТОЕ

доступное, удобное

СВЕЖОЕ И ВКУСНОЕ

ГОТОВО ЗА 60 СЕКУНД

НЕТ

расточительно НЕТ ГМО. БЕЗ ГУМ. БЕЗ НАПОЛНИТЕЛЕЙ. НЕТ БС.

Принесите Numilk в свою кофейню

В настоящее время обслуживается

ДОБАВЬТЕ NUMILK В ВАШЕ КАФЕ

СНИЖИТЕ СВОЙ УГЛЕРОДНЫЙ СЛЕД БЕЗ ЖЕРТВ

Чудесный вкус без отходов

Менее
60 секунд
за ливую

сочные молочные
добро

-эмульгирование посудомоечной машины
.

«(Numilk) производит устройство типа Keurig для растительного молока — и они только что заключили сделку на 2 миллиона долларов с Марком Кьюбаном»

«Машина, которая производит свежее растительное молоко и латте, борясь с пищевыми отходами».

«Сокращая количество шагов между сырьем и готовым продуктом, компания производит меньше ненужных отходов».

«Теперь, когда есть необходимость на кухне»

Переключиться на NUMIK и сохранить СРЕДНЕЕ значение

160 коробок со свалок

Ежегодно на домохозяйство.

Применение ГКР для обнаружения грибков, бактерий и вирусов

1. Зенг Л., Сен С. Применение и технические достижения рамановской спектроскопии в тканях человека. Подбородок. Дж. Лазер Мед. Surg. 2011;20:177–182. [Академия Google]

2. Флейшманн М., Хендра П.Дж., Маккуиллан А.Дж. Спектры комбинационного рассеяния пиридина, адсорбированного на серебряном электроде. хим. физ. лат. 1974; 26: 163–166. doi: 10.1016/0009-2614(74)85388-1. [CrossRef] [Google Scholar]

3. Альбрехт М.Г., Крейтон Дж.А. Аномально интенсивные спектры комбинационного рассеяния пиридина на серебряном электроде. Варенье. хим. соц. 1977; 99: 5215–5217. doi: 10.1021/ja00457a071. [CrossRef] [Google Scholar]

4. Фан М., Андраде Г.Ф., Броло А.Г. Обзор последних достижений в области применения поверхностно-усиленного комбинационного рассеяния в аналитической химии. Анальный. Чим. Акта. 2020;1097:1–29. doi: 10.1016/j.aca.2019.11.049. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

5. Шеридан С. Быстрые портативные тесты доступны онлайн для сдерживания пандемии коронавируса. Нац. Биотехнолог. 2020; 38: 515–518. doi: 10.1038/d41587-020-00010-2. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

6. Цуй Ф., Чжоу Х.С. Методы диагностики и потенциальные портативные биосенсоры для коронавирусной болезни 2019. Биосенс. Биоэлектрон. 2020;165:112349. doi: 10.1016/j.bios.2020.112349. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

7. Zhang N., Wang L., Deng X., Liang R., Su M., He C., Hu L., Su Y., Ren J., Yu F., et al. Последние достижения в обнаружении респираторных вирусных инфекций у человека. Дж. Мед. Вирол. 2020; 92: 408–417. doi: 10.1002/jmv.25674. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

8. Carter L.J., Garner L.V., Smoot J.W., Li Y., Zhou Q., Saveson C.J., Sasso J.M., Gregg A.C., Soares D.J., Beskid T.R. , и другие. Методы анализа и разработка тестов для диагностики COVID-19. Цент ACS. науч. 2020;6:591–605. doi: 10.1021/acscentsci.0c00501. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

9. Xia J., Tong J., Liu M., Shen Y., Guo D. Оценка коронавируса в слезах и секретах конъюнктивы у пациентов с атипичной пневмонией -КоВ-2 инфекция. Дж. Мед. Вирол. 2020; 92: 589–594. doi: 10.1002/jmv.25725. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

10. Lee T., Mohammadniaei M., Zhang H., Yoon J., Choi H.K., Guo S., Guo P., Choi J.W. Одиночная функционализированная пРНК/золотая наночастица для сверхчувствительного обнаружения микроРНК с использованием электрохимической рамановской спектроскопии с усилением поверхности. Доп. науч. 2020;7:1

7. doi: 10.1002/advs.201

7. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

11. Ву Ю., Чой Н., Чен Х., Данг Х., Чен Л., Чу Дж. Оценка эффективности поверхностно-усиленного комбинационного рассеяния — датчики полимеразной цепной реакции для будущего использования в чувствительных генетических анализах. Анальный. хим. 2020; 92: 2628–2634. doi: 10.1021/acs.analchem.9b04522. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

12. Hwang J., Lee S., Choo J. Применение полоски для иммуноанализа с боковым потоком на основе SERS для быстрого и чувствительного обнаружения стафилококкового энтеротоксина B. Наномасштаб. 2016;8:11418–11425. дои: 10.1039/C5NR07243C. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

13. Cardinal M.F., Vander Ende E., Hackler R.A., McAnally M.O., Stair PC, Schatz G.C., Van Duyne R.P. Расширение применения SERS за счет универсальной инженерии наноматериалов. хим. соц. 2017; 46:3886–3903. doi: 10.1039/C7CS00207F. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

14. Келли Дж., Патрик Р., Патрик С., Белл С.Е. Рамановская спектроскопия с усилением поверхности для обнаружения продуктов метаболизма в свободном пространстве над живыми бактериальными культурами. Ангью. хим. Междунар. Эд. 2018;57:15686–15690. doi: 10.1002/anie.201808185. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

15. Брузас И., Бринсон Б.Е., Горунмез З., Лум В., Ринге Э., Сагле Л. Рамановская спектроскопия поддерживаемых жидкостью липидных бислоев с усилением поверхности. Приложение ACS Матер. Интерфейсы. 2019;11:33442–33451. doi: 10.1021/acsami.9b09988. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

16. Prinz J. , Matković A., Pešić J., Gajić R., Bald I. Гибридные структуры для поверхностно-усиленного комбинационного рассеяния: ДНК-оригами/димер наночастиц золота/графен . Маленький. 2016;12:5458–5467. doi: 10.1002/smll.201601908. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

17. Lee S., Kim S., Choo J., Shin S.Y., Lee Y.H., Choi H.Y., Ha S., Kang K., Oh C.H. Биологическая визуализация клеток HEK293, экспрессирующих PLCγ1, с использованием рамановской микроскопии с усилением поверхности. Анальный. хим. 2007; 79: 916–922. doi: 10.1021/ac061246a. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

18. Wee E.J., Wang Y., Tsao S.C.-H., Trau M. Простое, чувствительное и точное мультиплексное обнаружение клинически важных мутаций ДНК меланомы в циркулирующей опухолевой ДНК с помощью нанометок SERS. . Тераностика. 2016;6:1506. doi: 10.7150/thno.15871. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

19. Шанмух С., Джонс Л., Дрискелл Дж., Чжао Ю., Длухи Р., Трипп Р.А. Быстрое и чувствительное обнаружение молекулярных сигнатур респираторных вирусов с использованием подложки SERS с массивом серебряных наностержней. Нано Летт. 2006; 6: 2630–2636. doi: 10.1021/nl061666f. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

20. Гальван Д.Д., Ю К. Поверхностно-усиленное комбинационное рассеяние для быстрого обнаружения и характеристики устойчивых к антибиотикам бактерий. Доп. Здоровьеc. Матер. 2018;7:1701335. doi: 10.1002/adhm.201701335. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]

21. Джамиль С., Джамиль Н., Саад У., Хафиз С., Сиддики С. Частота Candida albicans у пациентов с грибковой инфекцией. Дж. Колл. Врачи сург. пак. 2016;26:113–116. [PubMed] [Google Scholar]

22. Цедалей Б. Обзорный документ о биологии вируса картофеля Y (PVY), его экономическом значении и управлении им. Дж. Биол. Агр. Здоровьеc. 2015;5:110–126. [Google Scholar]

23. Секстон Д.Дж., Кордалевска М., Бенц М.Л., Уэлш Р.М., Перлин Д.С., Литвинцева А.П. Прямое обнаружение эмерджентного грибкового возбудителя Candida auris в клинических мазках кожи с помощью количественного ПЦР-анализа на основе SYBR green. Дж. Клин. микробиол. 2018;56:e01337-18. doi: 10.1128/JCM.01337-18. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

24. Edwards H.G.M., Russell N.C., Weinstein R., Wynnwilliams D.D. Раман-спектроскопическое исследование грибов с Фурье-преобразованием. Дж. Рамановская спектроскопия. 1995; 26: 911–916. doi: 10.1002/jrs.1250260843. [CrossRef] [Google Scholar]

25. Де Гуссем К., Ванденабиле П., Вербекен А., Моэнс Л. Спектроскопическое исследование комбинационного рассеяния Споры Lactarius (Russulales, Fungi) Спектрохим. Acta Часть A: Мол. биомол. Спектроск. 2005; 61: 2896–2908. doi: 10.1016/j.saa.2004.10.038. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

26. Чен Д., Чжан Ю., Бесшо Т., Кудо Т., Санг Дж., Хирахара Х., Мори К., Канг З. Формирование отражающих и проводящих серебряная пленка на поверхности АБС методом ковалентной прививки и распыления раствора. заявл. Серф. науч. 2015; 349: 503–509. doi: 10.1016/j.apsusc.2015.05.039. [CrossRef] [Google Scholar]

27. Wang R., Xu Y., Wang C., Zhao H., Wang R., Liao X., Chen L., Chen G. Изготовление НЧ ITO-rGO/Ag нанокомпозит двухэтапным хроноамперометрическим электроосаждением и его характеристика как SERS-подложки. заявл. Серф. науч. 2015;349: 805–810. doi: 10.1016/j.apsusc.2015.05.067. [CrossRef] [Google Scholar]

28. Xiang S., Xu Y., Liao X., Zheng X., Chen L., Li S. Динамический мониторинг процесса окисления фосфатидилхолина с использованием анализа SERS. Анальный. хим. 2018;90:13751–13758. doi: 10.1021/acs.analchem.8b04216. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

29. Su X., Xu Y., Zhao H., Li S., Chen L. Разработка и подготовка центробежного микрожидкостного чипа, интегрированного с обнаружением SERS, для быстрой диагностики. Таланта. 2019;194:903–909. doi: 10.1016/j.talanta.2018.11.014. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

30. Li X., Zhang Y., Xue B., Kong X., Liu X., Tu L., Chang Y., Zhang H. A SERS nano-tag Оптоволоконная стратегия для иммуноанализа in situ в необработанной цельной крови. Биосенс. Биоэлектрон. 2017;92:517–522. doi: 10.1016/j.bios.2016.10.070. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

31. Huang Z., Meng G., Chen B., Zhu C., Han F., Hu X., Wang X., Zhulin H., Guowen M., Бин С. и др. Поверхностно-усиленное комбинационное рассеяние от массивов Au-наностержней с зазорами менее 5 нм, торчащими из шаблона AAO. Дж. Наноски. нанотехнологии. 2016;16:934–938. doi: 10.1166/jnn.2016.10809. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

32. He S., Chua J., Tan E.K.M., Kah J.C.Y. Оптимизация усиления SERS легкого бумажного субстрата SERS с иммобилизованной золотой нанозвездой. RSC Adv. 2017;7:16264–16272. doi: 10.1039/C6RA28450G. [CrossRef] [Google Scholar]

33. Luo Z., Chen L., Liang C., Wei Q., ​​Chen Y., Wang J. Пористые углеродные пленки, декорированные наночастицами серебра, в качестве чувствительной подложки SERS и их применение. к идентификации вируса. Микрохим. Акта. 2017;184:3505–3511. doi: 10.1007/s00604-017-2369-у. [CrossRef] [Google Scholar]

34. Mabbott S., Thompson D., Sirimuthu N., Mcnay G., Faulds K., Graham D. От синтетической ДНК к продукту ПЦР: Обнаружение грибковых инфекций с помощью SERS. Фарадей Обсудить. 2016; 187: 461–472. doi: 10.1039/C5FD00167F. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

35. Sivanesan A., Witkowska E., Adamkiewicz W., Dziewit Ł., Kamińska A., Waluk J. Наноструктурированные серебряно-золотые биметаллические SERS-субстраты для селективной идентификации бактерий в человеческая кровь. Аналитик. 2014;139: 1037–1043. doi: 10.1039/c3an01924a. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

36. Дина Н.Е., Герман А., Чиз В., Сарбу С., Визер А., Бауэр Д., Хейш С. Характеристика клинически значимых грибов с помощью SERS-фингерпринтинга с помощью новые хемометрические модели. Анальный. хим. 2018;90:2484–2492. doi: 10.1021/acs.analchem.7b03124. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

37. Прусинкевич М.А., Фаразхорасани Ф., Дайнес Дж.Дж., Цзянь В., Каминский С. Доказательство принципа SERS-изображения гифы Aspergillus nidulans с использованием синтеза наночастиц золота in vivo. Аналитик. 2012; 137:4934–4942. doi: 10.1039/c2an35620a. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

38. Wang G.i., Wang Z., Chen Z.i., Chen L. Уравнение скорости гелеобразования золя хрома (III)-полиакриламида. Подбородок. Дж. Хим. 1995; 13:97–104. doi: 10.1002/cjoc.19950130202. [CrossRef] [Google Scholar]

39. Ван Ю., Ян Б., Чен Л. Теги SERS: Новые оптические нанозонды для биоанализа. хим. 2013; 113:1391–1428. doi: 10.1021/cr300120g. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

40. Koydemir H.C., Ozcan A. Носимые и имплантируемые датчики для биомедицинских приложений. Анну. Преподобный Анал. хим. 2018;11:127–146. doi: 10.1146/annurev-anchem-061417-125956. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

41. Chen H., Park S.G., Choi N. Аптасенсор на основе SERS-визуализации для сверхчувствительного и воспроизводимого обнаружения вируса гриппа A. Biosens. Биоэлектрон. 2020;167:112496. дои: 10.1016/j.bios.2020.112496. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

42. Чжао П., Ли Х. -С., Ли Д.-В., Хоу Ю.-Дж., Мао Л., Ян М., Ван Y. Стратегия магнитной сепарации на основе нанометок SERS для высокочувствительного иммунологического анализа необработанной цельной крови. Таланта. 2019;198:527–533. doi: 10.1016/j.talanta.2019.02.040. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

43. Bamrungsap S., Treetong A., Apiwat C., Wuttikhun T., Dharakul T. SERS-флуоресцентные двухрежимные нанометки для обнаружения рака шейки матки с использованием аптамеров, конъюгированных с золотом и серебром. наностержни. Микрохим. Акта. 2016;183:249–256. doi: 10.1007/s00604-015-1639-9. [CrossRef] [Google Scholar]

44. Madiyar F.R., Bhana S., Swisher L.Z., Culbertson CT, Huang X., Li J. Интеграция наноструктурного диэлектрофореза и рамановского зонда с улучшенной поверхностью для высокочувствительного быстрого обнаружения бактерий . Наномасштаб. 2015;7:3726–3736. doi: 10.1039/C4NR07183B. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

45. Lian Y., Hao S., Wang X., Qi P., Yang P. Резные нанокаркасы из биметаллического фосфида кобальт-железо как бифункциональный электрокатализатор для эффективного общего расщепления воды . хим. науч. 2019;10:464–474. doi: 10.1039/C8SC03877E. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

46. Zhang C., Wang C., Xiao R., Tang L., Huang J., Wu D., Liu S., Wang Y. , Zhang D., Wang S. Чувствительное и специфическое обнаружение клинических бактерий с помощью модифицированных ванкомицином Fe ₃ O ₄ @Au наночастиц и SERS-меток, функционализированных аптамерами. Дж. Матер. хим. Б. 2018;6:3751–3761. doi: 10.1039/C8TB00504D. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

47. Pang Y., Wan N., Shi L., Wang C., Sun Z., Xiao R., Wang S. Двойное распознавание комбинационного рассеяния с усилением поверхности ( SERS) биосенсор для обнаружения патогенных бактерий с использованием меток ванкомицин-SERS и аптамер-Fe ₃ O ₄ @Au. Анальный. Чим. Акта. 2019;1077:288–296. doi: 10.1016/j.aca.2019.05.059. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

48. He J., Qiao Y., Zhang H., Zhao J., Li W., Xie T., Zhong D., Wei Q., ​​Hua S. , Ю Ю. и др. Золото-серебряные нанооболочки способствуют заживлению ран от устойчивых к лекарствам бактериальных инфекций и позволяют осуществлять мониторинг с помощью визуализации комбинационного рассеяния с улучшенной поверхностью. Биоматериалы. 2020;234:119763. doi: 10.1016/j.biomaterials.2020.119763. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]

49. Е Ю.-Т., Гулино К., Чжан Ю., Сабестьен А., Чоу Т.-В., Чжоу Б., Линь З., Альберт И., Лу Х., Сваминатан В. А. быстрая и не требующая маркировки платформа для захвата и идентификации вирусов из клинических образцов. проц. Натл. акад. науч. США. 2020; 117: 895–901. doi: 10.1073/pnas.1910113117. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

50. Li Q., ​​Lu Z., Tan X., Xiao X., Wang P., Wu L., Shao K., Yin W. , Хан Х. Сверхчувствительное обнаружение афлатоксина B1 с помощью аптасенсора SERS на основе рециркуляционной амплификации с помощью экзонуклеазы. Биосенс. Биоэлектрон. 2017;97: 59–64. doi: 10.1016/j.bios.2017.05. 031. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

51. Ван Л., Ли П.С., Ю Х.-З., Парамесваран А.М. Обнаружение патогенных нуклеиновых кислот грибов достигается с помощью микрожидкостного микрочипового устройства. Анальный. Чим. Акта. 2008; 610:97–104. doi: 10.1016/j.aca.2007.12.048. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

52. Wang C., Madiyar F., Yu C., Li J. Обнаружение передающихся через воду патогенов с чрезвычайно низкой концентрацией с использованием мультиплексирующего самореферентного микрожидкостного биосенсора SERS. Дж. Биол. англ. 2017;11:9. doi: 10.1186/s13036-017-0051-x. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

53. Wang C., Xu Y., Deng C., Liu Z., Wang R., Zhao H. Дизайн и подготовка перерабатываемой микрофлюидной SERS чип со встроенным Au@Ag/TiO ₂ NTs. RSC Adv. 2016;6:113115–113122. doi: 10.1039/C6RA14947B. [CrossRef] [Google Scholar]

54. Torres-Nuñez A., Faulds K., Graham D., Alvarez-Puebla R.A., Guerrini L. Серебряные коллоиды как плазмонные субстраты для прямого безметочного анализа комбинационного рассеяния с усилением поверхности ДНК. Аналитик. 2016;141:5170. дои: 10.1039/C6AN00911E. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

55. Луо С.С., Сивашанмуган К., Ляо Дж.Д. Нанофабрикированные SERS-активные субстраты для обнаружения одиночных молекул вирусов in vitro: обзор. Биосенс. Биоэлектрон. 2014;61:232–240. doi: 10.1016/j.bios.2014.05.013. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

56. Morla-Folch J., Xie H.n., Gisbert-Quilis P., Pedro S.G.d., Pazos-Perez N., Alvarez-Puebla R.A., Guerrini L. Сверхчувствительная прямая количественная оценка модификации азотистых оснований в ДНК с помощью поверхностно-усиленного комбинационного рассеяния: случай цитозина. Ангью. хим. 2015; 127:13854–13858. doi: 10.1002/ange.201507682. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]

57. Морла-Фолч Дж., Альварес-Пуэбла Р.А., Геррини Л. Прямая количественная оценка состава ДНК с помощью спектроскопии комбинационного рассеяния с усилением поверхности. Дж. Физ. хим. лат. 2016;7:3037–3041. doi: 10.1021/acs.jpclett.6b01424. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

58. Miljani S.A., Ratkaj M., Matkovi M., Piantanida I., Gratteri P., Bazzicalupi C. Оценка теломерных G-квадруплексных структур человека с использованием поверхностно-усиленной рамановской спектроскопии . Анальный. Биоанал. хим. 2017; 409:2285–2295. doi: 10.1007/s00216-016-0172-y. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

59. Papadopoulou E., Bell S.E.J. Безметочное обнаружение наномолярной немодифицированной одноцепочечной и двухцепочечной ДНК с использованием спектроскопии комбинационного рассеяния с усилением поверхности на коллоидах Ag и Au. хим. Евро. Дж. 2012; 18:5394–5400. doi: 10.1002/chem.201103520. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

60. Белл С., Дик С. Количественная рамановская спектроскопия одиночных оснований в олигодезоксинуклеотидах с усилением поверхности. Фарадей Обсудить. 2017; 205:1012–1024. [PubMed] [Академия Google]

61. Юксель С., Швенкбир Л., Поллок С., Вебер К., Сиалла-Мэй Д., Попп Дж. Обнаружение Phytophthora ramorum без меток с использованием рамановской спектроскопии с усилением поверхности. Аналитик. 2015; 140:7254–7262. doi: 10.1039/C5AN01156F. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

62. Менегелло М., Пападопулу Э., Уго П., Бартлетт П.Н. Использование электрохимического SERS для измерения окислительно-восстановительного потенциала молекул лекарств, связанных с двухцепочечной ДНК — исследование митоксантрона. Электрохим. Акта. 2016; 187: 684–692. doi: 10.1016/j.electacta.2015.11.121. [Перекрестная ссылка] [Академия Google]

63. Масетти М., Се Х.Н., Крпетич З., Реканатини М., Альварес-Пуэбла Р.А., Геррини Л. Выявление взаимодействий ДНК с экзогенными агентами с помощью поверхностно-усиленного комбинационного рассеяния. Варенье. хим. соц. 2015; 137: 469–476. дои: 10.1021/ja511398w. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

64. Sun K., Huang Q., Meng G., Lu Y. Высокочувствительная и селективная спектроскопия комбинационного рассеяния с улучшенной поверхностью Безметочное обнаружение 3,3,4,4 -Тетрахлорбифенил с использованием ДНК-аптамер-модифицированных массивов Ag-Nanorod. Приложение ACS Матер. Интерфейсы. 2016; 8: 5723–5728. doi: 10.1021/acsami.5b12866. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]

65. Морла-Фолч Дж., Се Х.Н., Альварес-Пуэбла Р.А., Геррини Л. Быстрая оптическая химическая и структурная классификация РНК. АКС Нано. 2016;10:2834. doi: 10.1021/acsnano.5b07966. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

66. Morla-Folc J., Gisbert-Quili P., Masett M., Garcia-Rico E., Alvarez-Puebl R.A., Guerrin L. Innentitelbild: Конформационная SERS-классификация Мутации точки K-Ras для диагностики рака (Angew. Chem. 9/2017) Angew. хим. 2017;129:2256. doi: 10.1002/ange.201700564. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]

67. Lee J.-H., Kim B.-C., Byeung-Keun O., Choi J.-W. Быстрое и чувствительное определение вируса ВИЧ-1 на основе рамановской спектроскопии с усилением поверхности. Дж. Биомед. нанотехнологии. 2015;11:2223–2230. doi: 10.1166/jbn.2015.2117. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

68. Каминская А., Витковская Е., Ковальская А., Скочиньская А. , Ронкевич П., Шимборский Т., Валюк Дж. Быстрое обнаружение и идентификация возбудителей бактериального менингита в клинические образцы ex vivo методом SERS и анализом главных компонентов. Анальный. Методы. 2016; 8: 4521–4529. doi: 10.1039/C6AY01018K. [CrossRef] [Google Scholar]

69. Cheong Y., Kim Y.J., Kang H., Choi S., Lee H.J. Быстрая безэтикеточная идентификация штаммов Klebsiella pneumonia e , устойчивых к антибиотикам, путем нанесения капельного покрытия поверхностно-усиленный метод комбинационного рассеяния. Спектрохим. Акта Часть А Мол. биомол. Спектроск. 2017; 183:53–59. doi: 10.1016/j.saa.2017.04.044. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

70. Yang D., Zhou H., Haisch C., Niessner R., Ying Y. Воспроизводимый Обнаружение E. coli на основе SERS без меток и картирования. Таланта. 2016; 146: 457–463. doi: 10.1016/j.talanta.2015.09.006. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

71. Мирческу Н.Е., Чжоу Х., Леопольд Н., Чиш В., Ивлева Н. П., Нисснер Р., Визер А., Хайш С. На пути к безрецепторной иммобилизации и SERS-выявление возбудителей инфекций мочевыводящих путей. Анальный. Биоанал. хим. 2014; 406:3051–3058. doi: 10.1007/s00216-014-7761-4. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]

72. Zhou H., Yang D., Mircescu N.E., Ivleva N.P., Schwarzmeier K., Wieser A., ​​Schubert S., Niessner R., Haisch C. Обнаружение бактерий с помощью поверхностно-усиленного рамановского рассеяния на микрочипах на уровне отдельных клеток с использованием наночастиц серебра. Микрохим. Акта. 2015;182:2259–2266. doi: 10.1007/s00604-015-1570-0. [CrossRef] [Google Scholar]

73. Zhou H., Yang D., Ivleva N.P., Mircescu N.E., Niessner R., Haisch C. SERS обнаружение бактерий в воде путем покрытия in situ наночастицами Ag. Анальный. хим. 2014;86:1525–1533. дои: 10.1021/ac402935р. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

74. Дина Н., Чжоу Х., Колницэ А., Леопольд Н., Шоке-Надь Т., Коман С., Хайш С. Быстрое обнаружение и идентификация одиночных клеток патогенов с помощью рамановской спектроскопии с усилением поверхности. Аналитик. 2017; 142:1782–1789. doi: 10.1039/C7AN00106A. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

75. Premasiri W.R., Lee J.C., Sauer-Budge A., Théberge R., Costello C.E., Ziegler L.D. Биохимическое происхождение рамановских спектров бактерий с усилением поверхности: метаболомическое профилирование с помощью SERS. Анальный. Биоанал. хим. 2016; 408:4631–4647. doi: 10.1007/s00216-016-9540-х. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

76. Premasiri W., Chen Y., Williamson P., Bandarage D., Pyles C., Ziegler L. Быстрая диагностика инфекций мочевыводящих путей с помощью поверхностных усиленная рамановская спектроскопия (SERS): идентификация и чувствительность к антибиотикам. Анальный. Биоанал. хим. 2017; 409:3043–3054. doi: 10.1007/s00216-017-0244-7. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

77. Wang C., Wang J., Li M., Qu X., Zhang K., Rong Z., Xiao R., Wang S. Быстрый метод SERS для обнаружение бактерий без меток с использованием модифицированных полиэтиленимином магнитных микросфер, покрытых золотом, и наночастиц Au@Ag. Аналитик. 2016; 141:6226–6238. дои: 10.1039/C6AN01105E. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

78. Muhlig A., Bocklitz T., Labugger I., Dees S., Henk S., Richter E., Andres S., Merker M., Stockel S., Вебер К. и др. LOC-SERS: многообещающая закрытая система для идентификации микобактерий. Анальный. хим. 2016; 88: 7998–8004. doi: 10.1021/acs.analchem.6b01152. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

79. Витковска Э., Корсак Д., Ковальска А., Ксенжопольска-Гоцальска М., Недзюлка-Йонссон Ю., Рознецка Э., Михаловиц В., Альбрихт П., Подражка М., Холист Р. и др. Рамановская спектроскопия с усилением поверхности введена в правила Международной организации по стандартизации (ISO) в качестве альтернативного метода обнаружения и идентификации патогенов в пищевой промышленности. Анальный. Биоанал. хим. 2017;409: 1555–1567. doi: 10.1007/s00216-016-0090-z. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

80. Бордман А.К., Вонг В.С., Премасири В.Р., Зиглер Л.Д., Ли Дж. К., Милькович М., Клапперич С.М., Шарон А., Зауэр-Бадж А.Ф. Рапид обнаружение бактерий в крови с помощью рамановской спектроскопии с усилением поверхности. Анальный. хим. 2016; 88: 8026–8035. doi: 10.1021/acs.analchem.6b01273. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

81. He X., Zhou X., Liu Y., Wang X. Сверхчувствительный, перерабатываемый и портативный микрофлюидный биосенсор комбинационного рассеяния с усилением поверхности (SERS) для обнаружение ионов уранила. Сенсорные приводы B Chem. 2020;311:127676. doi: 10.1016/j.snb.2020.127676. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

82. Ko J., Park S.-G., Lee S., Wang X., Mun C., Kim S., Kim D.-H., Choo J. Бескультуральное обнаружение бактериальных патогенов на плазмонике массивы наностолбиков с использованием быстрого рамановского картирования. Приложение ACS Матер. Интерфейсы. 2018;10:6831–6840. doi: 10.1021/acsami.7b15085. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

83. Gao R., Cheng Z. , Wang X., Yu L., Guo Z., Zhao G., Choo J. Одновременный иммуноанализ двойных маркеров рака предстательной железы с использованием Микрокапельный канал на основе SERS. Биосенс. Биоэлектрон. 2018;119: 126–133. doi: 10.1016/j.bios.2018.08.015. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

84. Choi N., Lee J., Ko J., Jeon J.H., Rhie G.-E., de Mello A.J., Choo J. Интегрированная микрокапельная платформа на основе SERS для автоматизированный иммуноанализ антигенов F1 в Yersinia pestis . Анальный. хим. 2017; 89: 8413–8420. doi: 10.1021/acs.analchem.7b01822. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

85. Wang Y., Ruan Q., Lei Z.-C., Lin S.-C., Zhu Z., Zhou L., Yang C. Высокочувствительный и автоматизированный иммуноанализ на основе комбинационного рассеяния с усилением поверхности для обнаружения H5N1 с помощью цифровой микрофлюидики. Анальный. хим. 2018;90: 5224–5231. doi: 10.1021/acs.analchem.8b00002. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

86. Каминьска А., Витковска Э., Винклер К. , Дзенцелевски И., Вейхер Дж.Л., Валук Дж. Обнаружение антигена вируса гепатита В в крови человека: иммуноанализ SERS в микрожидкостная система. Биосенс. Биоэлектрон. 2015; 66: 461–467. doi: 10.1016/j.bios.2014.10.082. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

87. Jeon J., Choi N., Chen H., Moon J.-I., Chen L., Choo J. Капельная микрофлюидика на основе SERS для высокопроизводительного градиента анализ. Лабораторный чип. 2019;19:674–681. doi: 10.1039/C8LC01180J. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

88. Kim W., Lee S.H., Kim J.H., Ahn Y.J., Kim Y.-H., Yu J.S., Choi S. Рамановская спектроскопия с усилением поверхности на бумаге для диагностики пренатальные заболевания у женщин. АКС Нано. 2018;12:7100–7108. doi: 10.1021/acsnano.8b02917. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

89. Wang X., Park S.G., Ko J., Xiao X., Giannini V., Maier S.A., Kim D.H., Choo J. Чувствительный и воспроизводимый иммуноанализ множественных микотоксинов с использованием картирование комбинационного рассеяния с усилением поверхности на трехмерных массивах плазмонных наностолбов.